Présentation

  • Microscopie confocale, Multiphotonique, Imagerie Multimodale, Macroscopie de Fluorescence

    La Plateforme d’Imagerie et de Biophysique Cellulaire (PTIBC) est une plateforme de Microscopie Photonique Cellulaire et Tissulaire au sein de l’Université de Lorraine. Située dans les locaux du Bâtiment Biopôle sur le campus Brabois-Santé, le PTIBC IBiSA-Nancy a rejoint en 2009 le Laboratoire de Physiopathologie et Pharmacologie Articulaires UMR7561 CNRS UHP (dirigé par J. Magdalou) au sein de la Fédération de Recherche FR3209 BMCT CNRS-UL (dirigée par P. Netter / C. Branlant et puis par D. Mainard). Actuellement, la plateforme est adossée à l’UMR7365 IMoPA (CNRS-UL dirigée par JY. Jouzeau) et à l'UMS2008 IBSLor CNRS-UL-INSERM (dirigée par I. Motorine).                  

    Compte tenu de la qualité des diverses approches technologiques développées au PTIBC, l’évaluation inter organisme RIO (CNRS-INSERM-CEA) a labellisé le Service d’Imagerie et de Biophysique Cellulaire de l’UMR 7561/7365 CNRS-UL comme Plateau Technique d’Imagerie Cellulaire en 2003 puis Plateforme d’Imagerie Cellulaire en 2006 et 2007. Une nouvelle instance, GIS-IBiSA, se substitue à RIO depuis mai 2007, et le PTIBC fait partie des plateformes nationales labellisées IBiSA 2008-2011 et 2014-2017. Le PTIBC IBiSA Nancy fait également partie du GDR CNRS « Microscopie du Vivant » 2588 et participe aux actions du Réseau Technologique mfm sous l’autorité de la Mission Ressources et Compétences Technologiques (MRCT) CNRS.

    Actuellement, la plateforme vous propose : 

    • Un accès tarifé aux différents systèmes optiques (microscopes et macroscopes) pour les utilisateurs autonomes après formation spécifique aux différentes modalities en imagerie.
    • Des prestations sur mesure et des projets collaboratifs.

Accès et tarifs

  • La plateforme est ouverte à l’ensemble de la communauté locale, régionale et internationale, aussi bien scientifique académique ou industrielle.

    Elle est à votre disposition pour vous immerger dans le monde de l’imagerie photonique.

    La plateforme dispose d’une tarification différentielle (membres, laboratoires académiques et partenaires industriels).

Publications

  • Dijamentiuk A, Mangavel C, Elfassy A, Michaux F, Burgain J, Rondags E, Delaunay S, Ferrigno S, Revol-Junelles AM, Borges F. Invert emulsions alleviate biotic interactions in bacterial mixed culture. Microb Cell Fact. 2023 Jan 20;22(1):16.
    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1186/s12934-022-02014-w , Logo PMID - PubMed 36670385
  • Fayon A, Helle D, Francius G, Vincourt JB, Regnault V, Dumas D, Menu P, El Omar R. Characterization of an Innovative Biomaterial Derived From Human Wharton's Jelly as a New Promising Coating for Tissue Engineering Applications. Front Bioeng Biotechnol. 2022 Jun 13;10:884069.
    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3389/fbioe.2022.884069 , Logo PMID - PubMed 35769101 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-03753092
  • Moussaron A, Jouan-Hureaux V, Collet C, Pierson J, Thomas N, Choulier L, Veran N, Doyen M, Arnoux P, Maskali F, Dumas D, Acherar S, Barberi-Heyob M, Frochot C. Preliminary Study of New Gallium-68 Radiolabeled Peptide Targeting NRP-1 to Detect Brain Metastases by Positron Emission Tomography. Molecules. 2021 Nov 30;26(23):7273.
    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3390/molecules26237273 , Logo PMID - PubMed 34885871 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-03478676
  • Dos Santos Morais R, Louvet N, Borges F, Dumas D, Cvetkovska-Ben Mohamed L, Barrau S, Scher J, Gaiani C, Burgain J. Impact of Lacticaseibacillus rhamnosus GG on the Emulsion Stability of Raw Milk. Foods. 2021; 10(5):991.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3390/foods10050991 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-03214611
  • Toderi M, Galizzi G, Riquelme B, Dumas D. Study of the red blood cell aggregation by coherent anti-Stokes Ramanspectroscopy. Proc. SPIE 11251, Label-free Biomedical Imaging and Sensing (LBIS) 2020, 1125124 (2020 Feb 20)

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1117/12.2543073 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-02500626
  • Gomand F, Borges F, Guerin J, El-Kirat-Chatel S, Francius G, Dumas D, Burgain J, Gaiani C. Adhesive Interactions Between Lactic Acid Bacteria and β-Lactoglobulin : Specificity and Impact on Bacterial Location in Whey Protein Isolate. Front Microbiol - Frontiers in Microbiology. 2019 July 03.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3389/fmicb.2019.01512 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-02177524
  • Gluais M, Clouet J, Fusellier M, Decante C, Moraru C, Dutilleul M, Veziers J, Lesoeur J, Dumas D, Abadie J, Hamel A, Bord E, Chew SY, Guicheux J, Le Visage C. In vitro and in vivo evaluation of an electrospun-aligned microfibrous implant for Annulus fibrosus repair. Biomaterials. 2019 Jun ; 205:81-93.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1016/j.biomaterials.2019.03.010 , Logo PMID - PubMed 30909111 , logo HAL - Archives Ouvertes inserm-02102713
  • Yakavets I, Millard M, Lamy L, Francois A, Scheglmann D, Wiehe A, Lassalle H-P, Zorin V, Bezdetnaya L. Matryoshka-Type Liposomes Offer the Improved Delivery of Temoporfin to Tumor Spheroids. Cancers. 2019 September 13.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3390/cancers11091366
  • Avercenc-Léger L, Guerci P, Virion JM, Cauchois G, Hupont S, Rahouadj R, Magdalou J, Stoltz JF, Bensoussan D, Huselstein C, Reppel L. Umbilical cord-derived mesenchymal stromal cells: predictive obstetric factors for cell proliferation and chondrogenic differentiation. Stem Cell Res Ther. 2017 Jul 5 ; 8(1):161.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1186/s13287-017-0609-z , Logo PMID - PubMed 28676126 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-01715233
  • Geoffroy M, Kleinclauss A, Grandemange S, Hupont S, Boisbrun M, Flament S, Grillier-Vuissoz I, Kuntz S. Pro-apoptotic effect of Δ2-TGZ in "claudin-1-low" triple-negative breast cancer cells: involvement of claudin-1. Breast Cancer Res  Treat. 2017 Oct ; 165(3):517-527.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1007/s10549-017-4378-2 , Logo PMID - PubMed 28681173 , logo HAL - Archives Ouvertes HAL-01589665

Formation

  • Formation en imagerie multi-modalités

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    L’objectif des formations dispensées sur la plateforme vise à :

    • Apporter une autonomie instrumentale (sous l’autorité des permanents) en particulier pour les systèmes Confocaux et Multiphotons.
    • Donner aux utilisateurs les moyens d’interprétation de leurs résultats.
    • Minorer le coût des prestations  (qui n’intègre plus le coût de la mobilisation du personnel).

     

    A ce jour, 14 modules de formation sont proposés et son animés par le responsable de la plateforme.

    • Modules 1, 2 et 3 : Socle de base commun pour réserver et utiliser le microscope confocal (SP2 ou SP5-X) de manière autonome.
    • Module 4 : FRAP (SP2 ou SP5-X).
    • Module 5 : FRET en mode spectral.
    • Modules 6, 7 et 8 : Imagerie multiphotonique, au FLIM et FRET-Flim (SP2,  SP5 et SP8).
    • Module 9 : FCS (SP2).
    • Module 10 : Images de seconde harmonique (SHG) (SP2, SP5 et SP8). Les modules 1, 2, 3 et 6 doivent être validés au préalable.
    • Module 11 : Macroscope à Epifluorescence.
    • Module 12 : Macroscope Multiphoton (SP5- OPO PicoEmerald APE).
    • Module 13 : Microscope SP8 (diode lasers 488-555).
    • Module 14 : Microscope SP8-SHG-CARS (OPO PicoEmerald APE).

     

    Le contenu comprend un aspect théorique et un aspect pratique avec une validation des acquis.

    Chaque module est facturé (de 75 à 150 euros) mais des prix dégressifs sont accordés si plusieurs stagiaires du même laboratoire participent à une même session.

    L’inscription à un ou plusieurs modules est obligatoire. Elle nécessite l'envoi, par mail de la fiche formation et de la fiche travaux au responsable de la plateforme. Une attestation de participation est remise au stagiaire après formation.

contact

  • Service Mutualisé de Plateformes
    Biopôle, Campus Brabois-Santé
    9 Avenue de la Forêt de Haye, BP 20199
    54505 VANDOEUVRE-LES-NANCY