Présentation

  • Cycle cellulaire, Vésicules extracellulaires, Phénotypage, Tri, Apoptose, Respiration mitochondriale et glycolyse, Imagerie en temps réels

    La plateforme de Cytométrie en flux-Biologie Cellulaire fait partie intégrante du Service Mutualisé de Plateformes Ingénierie Biologie Santé en Lorraine.

    Installée sur le campus Brabois-Santé de l'Université de Lorraine à Nancy, elle propose des équipements innovants pour toutes les applications en analyses et tri cellulaires. Elle offre trois types de prestations avec un environnement approprié pour garantir le support au développement des projets scientifiques :

    • Analyse en cytométrie en flux
      • Cytomètre analyseur Celesta Sorp, BD Biosciences : 4 lasers - 16 couleurs : Formation, mise à disposition de l'instrument et prestations.
      • Cytomètre analyseur Symphony A3, BD Biosciences : 5 lasers - 28 couleurs : Formation, mise à disposition de l'instrument et prestations.
    • Tri cellulaire : Analyseur - Trieur Astrios, Beckman Coulter : 3 lasers - 14 couleurs : Réalisation du tri par le personnel de la plateforme.
    • Métabolisme cellulaire Seahorse XFp Analyzer, Agilent : Formation et mise à disposition de l'instrument.
    • Imagerie en temps réel : Cytation 10 - Couplé Biospa : Formation, mise à disposition de l'instrument et prestations.
       

    La plateforme met à disposition des équipes une expertise et une assistance pour soutenir les projets de recherche. L’expertise au service des utilisateurs concerne des domaines variés (analyse du cycle cellulaire et de l’apoptose, tri de cellules rares, tri multiparamétrique). Elle repose également sur un véritable savoir-faire technique reconnu sur la détection et la standardisation de l’analyse des microparticules humaines circulantes. L’objectif est de satisfaire tous les besoins en cytométrie et analyses liées à la recherche en laboratoire en étant ouvert à toute la communauté scientifique académique (CNRS, INSERM, UL ...) et industrielle.

    Nos missions sont d’adapter les développements méthodologiques de la plateforme en relation avec les projets des utilisateurs, de proposer des activités de transfert de connaissances du domaine auprès de scientifiques, d'étudiants et de personnels en stage (formation continue). Nous maintenons une veille technologique associée à la montée en compétence de l’offre de service.

    Le personnel travaille pour assurer le bon fonctionnement de la plateforme :

    • Organisation de l'activité (planification des réservations, stockage des données).
    • Formation / support utilisateur.
    • Suivi et analyse de projets.
    • Maintenance et gestion du matériel et des équipements.
       

    Depuis 2020, elle est labellisée INFRA+ de LUE (Lorraine Université d'Excellence).

     

Accès et tarifs

  • La plateforme est ouverte à la communauté scientifique académique et industrielle au niveau local, national et international.

    L'équipe est à votre disposition pour vous aider en apportant ses savoir-faires techniques et méthodologiques et vous accompagner de A à Z dans vos projets de cytométrie.

    La plateforme dispose d'une tarification différentielle (membres, académiques et industriels).

    Tout nouveau collaborateur doit contacter la responsable de plateforme afin de définir la meilleure stratégie à adopter pour la conduite de l’étude, et obtenir un devis.

    Tout utilisateur s’engagera à accepter les conditions générales (charte utilisateurs).

    Pour accéder au système de réservation des équipements, cliquez ici.

Publications

  • Regnault V, Didelot M, Ollivier V, Lakomy C, Lagrange J, Louis H, Denis CV, Malikov S, Lacolley P, Michel JB. NF-κB-Mediated Upregulation of Tissue Factor Contributes to the Procoagulant Phenotype of Smooth Muscle Cells from Abdominal Aorta Aneurysm in Human. Thromb Haemost. 2026 Mar;126(3):319-331. 

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1055/a-2665-2510 , Logo PMID - PubMed 40719143
  • Pochon C, Perouf R, Notarantonio AB, Bertrand A, Charif N, Marcelo CB, Fouquet G, Cauchois G, Bensoussan D, Moulin D, Pagliuca S, de Isla N, Sartelet H, D'Aveni M, Rubio MT. Optimized GMP-grade Wharton's jelly's mesenchymal stromal cells manufacturing and administration protocol for Graft versus Host disease prevention. Curr Res Transl Med. 2025 Dec;73(4):103543.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1016/j.retram.2025.103543 , Logo PMID - PubMed 40957136
  • Notarantonio AB, Bertrand A, Piucco R, Fievet G, Sartelet H, Boulangé L, de Isla N, De Carvalho Bittencourt M, Hergalant S, Rubio MT, D'Aveni M. Highly immunosuppressive myeloid cells correlate with early relapse after allogeneic stem cell transplantation. Exp Hematol Oncol. 2024 May 11;13(1):50. 

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1186/s40164-024-00516-4 , Logo PMID - PubMed 38734654
  • Atsou S, Schellenberg C, Lagrange J, Lacolley P, Lenting PJ, Denis CV, Christophe OD, Regnault V. Thrombin generation on vascular cells in the presence of factor VIII and/or emicizumab. J Thromb Haemost. 2024 Jan;22(1):112-125. 

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1016/j.jtha.2023.09.017 , Logo PMID - PubMed 37776978
  • Calcagno G, Jeandel J, Frippiat JP, Kaminski S. Simulated Microgravity Disrupts Nuclear Factor κB Signaling and Impairs Murine Dendritic Cell Phenotype and Function. Int J Mol Sci. 2023 Jan 15;24(2):1720. 

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3390/ijms24021720 , Logo PMID - PubMed 36675236
  • Fonte C, Jacob P, Vanet A, Ghislin S, Frippiat JP. Hindlimb unloading, a physiological model of microgravity, modifies the murine bone marrow IgM repertoire in a similar manner as aging but less strongly. Immun Ageing. 2023 Nov 20;20(1):64. 

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1186/s12979-023-00393-1 , Logo PMID - PubMed 37986079
  • Foret T, Dufrost V, Heymonet M, Risse J, Faure GC, Louis H, Lagrange J, Lacolley P, Devreese K, Gibot S, Regnault V, Zuily S, Wahl D. Circulating Endothelial Cells are Associated with Thromboembolic Events in Patients with Antiphospholipid Antibodies. Thromb Haemost. 2022 Oct 28.
    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1055/a-1926-0453 , Logo PMID - PubMed 35977699
  • Calcagno G, Ouzren N, Kaminski S, Ghislin S, Frippiat JP. Chronic Hypergravity Induces a Modification of Histone H3 Lysine 27 Trimethylation at TCRβ Locus in Murine Thymocytes. Int J Mol Sci. 2022 Jun 27;23(13):7133.
    logo DOI - Digital Object Identifier 10.3390/ijms23137133 , Logo PMID - PubMed 35806138
  • Deshayes F, Fradet M, Kaminski S, Viguier M, Frippiat JP, Ghislin S. Link between the EZH2 noncanonical pathway and microtubule organization center polarization during early T lymphopoiesis. Sci Rep. 2022 Mar 7;12(1):3655.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1038/s41598-022-07684-5 , Logo PMID - PubMed 35256668
  • Durand M, Hagimont E, Louis H, Asfar P, Frippiat JP, Singer M, Gauchotte G, Labat C, Lacolley P, Levy B, Glenn Chousterman B, Kimmoun A. The β1-Adrenergic Receptor Contributes to Sepsis-Induced Immunosuppression Through Modulation of Regulatory T-Cell Inhibitory Function. Crit Care Med. 2022 Feb 18.

    logo DOI - Digital Object Identifier 10.1097/CCM.0000000000005503 , Logo PMID - PubMed 35234431

Formation

  • Formation

    Formation Cytometrie en flux – Autonomie sur Celesta et sur Symphony

    ( -> )

    La plateforme Cytométrie vous propose deux sessions de formation (février et septembre-octobre) « Cytométrie - Celesta et Symphony».

    Programme d’une session :

    Théorique (2h) :

    • Bases théoriques de la cytométrie en flux. Principes de fonctionnement.
    • Rappel de certains concepts d’immunotechnologies.
    • Analyse multiparamétrique : intérêt et contraintes associées.
       

    Pratique (4h) :

    • Prise en main de l’instrument. Conditions d’utilisations. Découverte du logiciel d’acquisition.
    • Création de protocoles et de suite de protocoles.
    • Réglages de l’instrument. Mise en place d’une analyse multicouleurs.
    • Exploitation des capacités de retraitement du logiciel d’acquisition.

contact

  • Trieur Astrios & Cytomètre Symphony :

    Service Mutualisé de Plateformes
    Biopôle, Campus Brabois-Santé
    9 Avenue de la Forêt de Haye, BP 20199
    54505 VANDOEUVRE-LES-NANCY

    Cytomètre Celesta & Cytation & Seahorse :

    Service Mutualisé de Plateformes - UMR1116 DCAC
    Bâtiment D, 1er étage, Campus Brabois-Santé
    9 Avenue de la Forêt de Haye, BP 20199
    54505 VANDOEUVRE-LES-NANCY